细叶百合的组织培养方法技术

一种细叶百合的组织培养方法，采用细叶百合的鳞茎作为外植体，外植体取自中层鳞片部位，切成条状，灭菌处理后，在培养温度25±1℃，光照强度2500Lx，白天自然光照，夜间补光4小时/天的培养条件下，依次接种到由MS、1.0mg/L?6-BA、0.1mg/L?NAA、5mg/LVc组成的初代诱导培养基，由MS、0.2mg/L?6-BA、0.01mg/L?NAA组成的继代增殖培养基，由1/2MS、0.5mg/L?IBA组成的生根培养基，由1/2MS、0.5mg/L?IBA、附加2％白糖组成的结球培养基上进行培育，该培养方法可以短时间内获得室内大规模繁殖的细叶百合组培苗，生产率高，具有潜在的生态效益和社会效益。

【技术实现步骤摘要】

本专利技术属于植物生物
，具体地说，涉及一种细叶百合的组织培养及再生体系的建立，包括外植体的选择及灭菌，不同时期培养基的筛选，培养条件对培养物生长发育的影响，快速繁殖技术以及再生体系的建立等内容。
技术介绍
细叶百合(Lilium pumilum)又名山丹花，是百合科百合属多年生鳞茎类花卉。株秆高30-40厘米，茎上生叶，细长纤弱，狭长如松叶。花下垂，春末夏初开放，花瓣向外反卷， 色鲜红，通常无斑点，有时近基部有少数斑点，有光泽，具清香，甚美丽。花期6-8月，果期 8-9月。生山坡草地或林缘。分布于中国黑龙江、吉林、辽宁、河北、河南、山东、山西、内蒙古、陕西、宁夏、甘肃、青海等省区。细叶百合株形秀丽，是我国东北、华北、西北地区著名的野生花卉，宜成片种植于疏林下、草坪中。而且由于其生性强健、耐寒耐旱，在北方干旱、半干旱地区自然降水的条件下即可正常生长，是百合属中分布最广、纬度偏北的一种，非常符合北方干旱地区城市园林绿化、美化发展的需要，应用前景十分广阔。但是由于其自然繁殖系数很低，且存在自然退化问题，加之人为过度采挖和自然因素的影响，使其成为稀有濒危植物。目前常见的人工繁殖细叶百合的方法，主要是采用分植小鳞茎、播种法及鳞片扦插法，不但繁殖数量有限，还极易导致病害感染和品质退化。在百合的优良品种快速繁殖、脱毒复壮、新品种培育以及应用生物技术进行分子育种中，组织培养都是比较适宜的方法。组织培养法繁殖取材方便，不受自然条件的限制， 可以不断进行大量繁殖，是细叶百合引种栽培、快速繁殖、脱毒复壮以及新品种培育的最有效方法，可以在短期内获得大量小苗，解决了栽培中种源较少的问题，为细叶百合今后的研究以及规模化、产业化开发利用提供了理论依据。因此，深入开展细叶百合组织培养研究已成为科研工作者亟待进行的工作之一。百合的组织培养始于20世纪50年代，自1957年RcAb首次用百合鳞片进行组织培养获得成功后，百合离体繁殖技术日益成熟，在优良品种的快速繁殖、新品种培育以及种质资源保存等方面发展较快。迄今为止，国内外组织培养成功的百合种及品种已超过数百个，但多见于报道的是用于鲜切花生产的栽培品种，对中国野生百合的组织培养研究较少。 总结近20年来的文献数据，仅十余种野生百合组织培养成功，有关细叶百合的更是屈指可数。CN1460409 (03135142. 5)公开了一种兰州百合的快速繁殖方法，选取兰州百合鳞片、叶和根的切段，采用外植体消毒后接入含不同植物激素的培养基，诱导产生芽，继代培养后移入生根培养基，当试管苗高约3-5厘米时移栽入种植练苗基质，鳞片不定芽的诱导和快繁培养基为MS，BA 2mg/L、NAA 0. ang/L，根、叶诱导和繁殖培养基为MS，BA 2mg/L、 NAAO. %ig/L，试管苗生根培养基为1/2MS，NAA 0. :3mg/L，温度27士2°C，光照强度2000Lx，光照时间 12hour/day, pH 为 5.8。CN101156552 (200710066339. 1)公开了一种东方百合组织培养脱毒的方法，选择健康的百合鳞片分切后诱导出不定芽，将不定芽转接到生长培养基上，变温培养30天后，切取茎尖移植到生长培养基中继续变温培养30 60天后，便可得到所需的无毒株系。本专利技术脱毒效果显著，效率高，一般品种可达到90% 100%。其操作简便，成本低廉，具有良好的应用前景。但上述培养基和方法并不适用于细叶百合，本专利技术系统地研究了细叶百合组培中不同阶段的最佳培养基，最适的培养条件及培养方式；在利用试管小鳞茎剥离扩繁及种子再生培养方面具有独特的创新；为细叶百合再生体系的建立提供了科技支撑，解决了细叶百合繁殖速度慢的难题，为实现抗旱景观绿化新理念增添了品种并具有较强的实用性，为实现细叶百合鳞茎的工厂化生产奠定了可靠的基础。
技术实现思路
本专利技术的目的是利用植物组织培养方法，短时间内获得室内大规模繁殖的细叶百合组培苗，以形成下厂化、规模化、产业化生产，并克服传统鳞茎繁殖倍数低，速度慢，易病害感染和品质退化的缺点，可常年提供组培苗的新的繁殖方法。本专利技术选取了细叶百合的鳞片为外植体，研究包括外植体的选择及灭菌、不同时期培养基的筛选、培养条件对培养物生长发育的影响，、快速繁殖技术以及再生体系的建立等内容。在本专利技术的实施方案中，包含一种细叶百合(Lilium pumilum)的组织培养方法， 其特征在于它由以下步骤组成步骤1 采用细叶百合的鳞茎作为外植体，对其进行灭菌处理，用于不定芽的诱导；再利用试管再生小鳞茎作为外植体，直接接入进行诱导。步骤2 将外植体接种于MS+6-BA 1. Omg/L+NAA 0. lmg/L+Vc5mg/L的初代诱导培养基上，诱导出细叶百合鳞片不定芽；步骤3 将步骤2分化出的长约l-3cm的鳞片不定芽取出，接种于MS+6-BA 0. 2mg/ L+NAA 0. 01mg/L的继代增殖培养基上，增殖出大量细叶百合组培苗；步骤4 将步骤3分化出的长约的细叶百合组培苗，接种于1/2MS+IBA 0. 5mg/L的生根培养基上，直接进行诱导生根；步骤5 将步骤4分化出的细叶百合生根苗，接种于1/2MS+IBA 0. 5mg/L+食用白糖2%的结球培养基中，诱导进行结球。各步骤的培养条件为培养温度25士 1°C，光照强度2500LX，除白天自然光照外， 夜间补光4小时/天。在本专利技术实施方案中，在本领域技术人员公知范围内，NAA、6_BA、IBA、V。分别是萘乙酸、6-苄氨基嘌呤、吲哚丁酸、维生素C的简称。在本专利技术的实施方案中，进一步根据细叶百合鳞茎的不同部位的诱导分化率不同，通过实验表明鳞片分化能力(分化频率和速度)为外部> 内部，诱导率依次为外层>中层> 内层。而且，同一鳞片不同部位诱导分化率也存在明显差异，诱导率顺序为下部>中部 >上部，即鳞片基部分化能力最强，中部次之，上部最差。又由于外层鳞片机械损伤程度高， 病虫害影响严重，鳞片含菌量高，接种后污染严重，而内层鳞片边缘易形成愈伤组织，获得的苗长势较弱，中层鳞片的芽诱导率及接种后芽的生长情况都最好，污染率低。此外，当切块小于Icm2时几乎不产生分化。因此，本专利技术明确提出细叶百合进行组织培养时的最佳外植体为中层鳞片，其诱导率及接种后芽的生长势最好，是初代进行芽诱导培养的最佳外植体。还提出纵向分割的鳞片，将鳞片切成条块，使每条都带有基部组织，每条均可诱导分化出芽，其诱导率均可达 90%以上，这样就使每片鳞片的诱导分化率成倍的提高了。在本专利技术实施方案中，利用试管再生小鳞茎是一个有效提高初代培养诱导分化率的手段。试管小鳞茎的再生诱导率可达80%以上，污染率几乎为零，而且由原初鳞片组培后得到的试管小鳞茎的鳞片的分化能力>原初培养鳞片的分化能力。这样，既节省了野生资源，又简化了外植体的灭菌程序，提高了诱导分化率，是加快繁殖的主要方法。同时，在本专利技术实施方案中，接种细叶百合时以不同方式插入培养基后的诱导率也不同鳞片背面插入>基部斜插>腹面插入，说明接种操作时鳞片的放置方法和与培养基的接触部位也影响其诱导能力，而近轴面更易诱导芽产生。本专利技术还包括了外植体表面杀菌剂及灭菌方法的选择，对不同种类消毒剂，相本文档来自技高网...

【技术保护点】
１．一种细叶百合的组织培养方法，其特征在于它由以下步骤组成：步骤１：采用细叶百合的鳞茎作为外植体，对其进行灭菌处理，用于不定芽的诱导；再利用试管再生小鳞茎作为外植体，直接接入进行诱导；步骤２：将外植体接种于ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．１ｍｇ／Ｌ＋Ｖｃ　５ｍｇ／Ｌ的初代诱导培养基上，诱导出细叶百合鳞片不定芽；步骤３：将步骤２分化出的长约１－３ｃｍ的鳞片不定芽取出，接种于ＭＳ＋６－ＢＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．０１ｍｇ／Ｌ的继代增殖培养基上，增殖出大量细叶百合组培苗；步骤４：将步骤３分化出的长约３－４ｃｍ的细叶百合组培苗，接种于１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ的生根培养基上，直接进行诱导生根；步骤５：将步骤４分化出的细叶百合生根苗，接种于１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋２％的食用白糖的结球培养基中，诱导结球。

【技术特征摘要】

【专利技术属性】
技术研发人员：王召明，梁德霖，姚裕琪，
申请(专利权)人：内蒙古和信园蒙草抗旱绿化股份有限公司，
类型：发明
国别省市：15